Содержание к диссертации
Введение
Обзор литературы 9
1. История открытия tnf 9
2. Суперсемейство tnf 10
3. Структура системы tnfnfr 12
4. Функции tnf 15
5. Роль TNF в патогенезе ревматоидного артрита и других аутоиммунных заболеваний 16
6. Терапевтическая блокировка tnf 18
7. Побочные эффекты и ограничения антиnf терапии 23
8. Новые подходы и перспективы tnf блокировки 25
Материалы и методы исследования 29
1. Получение и характеристика нового верблюжьего одно доменного антитела к tnf человека 29
Экспрессия и очистка однодоменного антитела Vhh41 29
Оценка связывания антитела Vhh41 с TNF человека методом ИФА 30
Изучение взаимодействия Vhh41 и TNF человека методом поверхностного плазменного резонанса 31
Исследования способности Vhh41 блокировать TNF человека 31
2. Конструирование, получение и характеристика гибридных белков флуоресцентных сенсоров TNF 32
Конструирование генов, кодирующих сенсоры TNF. 32
Экспрессия и очистка флуоресцентных сенсоров TNF. 33
Анализ взаимодействия Vhh41-K с рекомбинантным TNF. 34
Исследование биологических свойств флуоресцентного сенсора Vhh41-KTNFin vitro и in vivo . З5
Изучение способности флуоресцентного сенсора связывать TNF in vivo 36
Прижизненное изучение экспрессии TNF с помощью полученного флуоресцентного сенсора...39
3. Получение и характеристика одноцепочечного АНТИNF антитела 40
Изучение мышиного моноклонального антитела F10 40
Конструирование и экспрессия одноцепочечного антитела ahT-4 41
Измерение биологической активности одноцепочечного антитела ahT-4 42
4. Получение и характеристика химерного антиnf антитела 43
5. Конструирование, получение и характеристика биспецифических антител А9 и МА9 43
Конструирование, экспрессия и очистка антител А9 и тА9 43 Взаимодействие антител А9 и тА9 с рекомбинантным TNF человека методом
поверхностного плазменного резонанса 44
Цитотоксический тест 45
Цитофлуориметрия 45
Оценка способности биспецифического антитела А9удерживать TNF человека на
поверхности макрофагов 45
6. Сравнительная оценка эффективности системной и селективной блокировки макрофагального TNF 46
Модель острой гепатотоксичности, индуцированной введением JIIJC/D-галактозамина 46
Результаты и обсуждение 48
1. Получение и характеристика нового рекомбинантного одно доменного антитела, специфически связывающегося с TNF человека, но не блокирующего его биологическую активность 50
Создание генетической конструкции, кодирующей рекомбинантное однодоменное антитело
Vhh41 50
Экспрессия и очистка рекомбинантного однодоменного антитела Vhh41 52
Анализ взаимодействия однодоменного антитела Vhh41 с TNF человека 53
Анализ способности антитела Vhh41 блокировать биологическую активность TNF человека.54
2. Конструирование, получение и характеристика молекулярных сенсоров TNF для прижизненного изучения экспрессии tnf на основе одно доменных рекомбинантных антител и красного флуоресцентного белка 56
Получение генетических конструкций, кодирующих флуоресцентный сенсор TNF Vhh41-Ku
контрольные гибридные белки 56
Экспрессия и очистка флуоресцентного сенсора TNF Vhh41-K. 57
Анализ взаимодействия флуоресцентного сенсора TNF Vhh41-К с рекомбинантным TNFмыши
и человека 58
Исследование биологических свойств флуоресцентного сенсора TNF Vhh41-Kin vitro и in vivo. 61
Изучение способности флуоресцентного сенсора связывать TNF in vivo 66
Прижизненное изучение экспрессии TNFс помощью полученного флуоресцентного сенсора... 69
3. Получение и характеристика рекомбинантного одноцепочечного антитела, блокирующего биологическую активность TNF 72
Измерение активности мышиного моноклонального антитела F10 72
Конструирование одноцепочечного антитела на базе вариабельных фрагментов легкой и
тяжелой цепей мышиного моноклонального антитела F 10 74
Измерение активности одноцепочечного антитела ahT-4 75
4. Разработка и анализ химерного антитела против TNF человека
Сравнение кинетики взаимодействий химерного антитела 13239 и инфликсимаба с
рекомбинантным TNF человека 77 Сравнение нейтрализующей активности химерного антитела 13239 с активностью
инфликсимаба in vitro 79
Анализ активности химерного антитела 13239 in vivo 80
5. Конструирование, получение и характеристика селективного б локатора tnf, производимого клетками моноцитарно-макрофагального ряда 82
Молекулярное клонирование, экспрессия и очистка биспецифических антител 82
Взаимодействие антител А9 и тА9 срекомбинантным TNF человека 86
Блокировка антителами А9 и тА9 TNF-зависимой цитотоксичности in vitro 87
Анализ связывания антител А9 и тА9 с поверхностью макрофагов через взаимодействие с
поверхностной молекулой F4/80 89
Удержание эндогенно продуцируемого TNF человека на поверхности макрофагов
биспецифическим антителом А9 93
6. Физиологически значимая селективная блокировка tnf, производимого клетками моноцитарно-макрофагального ряда in vivo 96
Сравнительная оценка эффективности направленной блокировки TNF, производимого клетками моноцитарно-макрофагалъного ряда, и системной блокировки TNF в модели острой
гепатотоксичности 96
Заключение 99
Список литературы 100
- Роль TNF в патогенезе ревматоидного артрита и других аутоиммунных заболеваний
- Изучение взаимодействия Vhh41 и TNF человека методом поверхностного плазменного резонанса
- Исследование биологических свойств флуоресцентного сенсора Vhh41-KTNFin vitro и in vivo
- Получение и характеристика нового рекомбинантного одно доменного антитела, специфически связывающегося с TNF человека, но не блокирующего его биологическую активность
Роль TNF в патогенезе ревматоидного артрита и других аутоиммунных заболеваний
Первый опыт антицитокиновой терапии был осуществлен в 1985 г., когда мышам была введена поликлональная антиNF кроличья сыворотка, что предотвратило развитие у них летальной гепатотоксичности, индуцированной введением ЛПС [103]. Аналогичные результаты были получены на обезьянах: павианы, которым вводилось моноклональное мышиное антитело против TNF человека, выжили, после внутривенной инъекции летальной дозы Е. coli [ 104].
Первый терапевтический блокатор TNF был разработан на основе высокоаффинного мышиного моноклонального антитела А2, полученного из мышей, иммунизированных TNF человека [105]. Поскольку антитела других видов имеют существенные отличия в аминокислотной последовательности, они непригодны для долговременного терапевтического использования в людях. Поэтому методами генной инженерии мышиные константные домены тяжелой и легкой цепей были заменены на человеческие. Вариабельные участки, связывающие антиген, при этом остались неизмененными [106]. Подобные антитела называются химерными. Впоследствии это первое терапевтическое антитело против TNF получило международное непатентованное название - инфликсимаб.
Одной из наиболее очевидных областей применения антиNF терапии было лечение сепсиса. Однако клинические исследования не показали значительных результатов [105], что, по всей видимости, связанно с тем, что к моменту развития клинической картины сепсиса необратимые сигнальные каскады уже запущены.
К этому моменту было накоплено уже много фактов, говорящих об участии TNF в патогенезе ревматоидного артрита, поэтому это заболевание было выбрано в качестве следующей потенциальной мишени для антиNF терапии. Пилотные исследования инфликсимаба в ревматоидном артрите дали многообещающие результаты [107, 108], а дальнейшее рандомизированное двойное слепое исследование подтвердило эффективность антиNF терапии в терапии аутоиммунных заболеваний [109]. Однако после повторных инъекций у некоторых пациентов вырабатывались антитела, специфичные к мышиным аминокислотным последовательностям в вариабельных доменах, что снижало эффективность терапии.
Двойное слепое рандомизированное исследование показало, что инфликсимаб обладает синергическим эффектом с небольшими дозами метотрексата -цитостатического препарата, использующегося для монотерапии РА. В сочетании эти два препарата обладают большей эффективностью, а иммуногенность инфликсимаба снижается [110]. Последовавшие II/III фазы клинических испытаний привели к одобрению инфликсимаба для терапии РА [111].
Механизм действия инфликсимаба обусловлен, в основном, связыванием растворимого TNF в системном кровотоке и в местах локальной гиперэкспрессии (синовиальная полость при РА). Но, кроме того, инфликсимаб способен связываться с трансмембранной формой TNF и вызывать лизис клеток, несущих его на своей поверхности через механизм антитело-зависимой цитотоксичности [112].
АнтиNF терапия разрывает патологический сигнальный каскад и приводит к снижению воспалительной реакции, но, кроме того, она способна сбалансировать дисрегулированную иммунную систему. На фоне введения ингибиторов TNF сдвигается баланс Т-эффекторных и Т-регуляторных клеток [113].
АнтиNF терапия не является этиотропной терапией и теоретически должна применяться в течение всей жизни больного, однако в некоторых случаях удается добиться стойкой ремиссии, которая сохраняется и после отмены антиNF терапии [114,115].
Блокаторы TNF показали свою эффективность и при терапии других аутоиммунных и воспалительных заболеваний: было показано, что TNF играет значимую роль в патогенезе болезни Крона - он сверхэкспрессируется в воспаленных участках кишечника [100, 116, 117]. Предварительные успехи в терапии болезни Крона, резистистентной к стандартной терапии, с помощью инфликсимаба [118] позднее подтвердились в рандомизированных клинических испытаниях [119-121] в результате чего инфликсимаб был одобрен для терапии и этого заболевания.
Патогенез анкилозирующего спондилита (болезни Бехтерева), еще одного хронического системного аутоиммунного заболевания с преимущественным поражением суставов, также обусловлен сверхэкспрессией TNF. Клинические испытания инфликсимаба оказались успешными и для этого заболевания [122, 123]. Кроме того, антиNF терапия показала высокую эффективность в лечении псориаза [124] и псориатического артрита [125].
На сегодняшний момент инфликсимаб и другие блокаторы TNF утверждены в качестве терапевтических агентов для следующих аутоиммунных заболеваний: ревматоидный артрит, ювенильный идиопатический артрит, анкилозирующий спондилит, болезнь Крона, язвенный колит, псориаз, псориатический артрит. Кроме этого, антагонисты TNF показали положительные результаты в терапии саркоидоза [126], гранулематоза Вегенера [127], болезни Бехчета [128] и других хронических заболеваний.
Указания на то, что TNF играет роль в патогенезе рассеянного склероза [129-131], были подтверждены экспериментами на лабораторных животных. Введение TNF усиливало симптоматику экспериментального аутоиммунного энцефаломиелита у крыс [132], а введение антиNF антитела предотвращало развитие этого заболевания [133, 134].
Однако клинические исследования по терапии рассеянного склероза инфликсимабом и еще одним блокатором TNF - ленерцептом (растворимый TNFR1) не дали значимого клинического ответа [12]. Более того, у некоторых пациентов
Модельное аутоиммунное заболевание, патогенез которого сходен с патогенезом множественного склероза. наблюдалось усиление клинических симптомов заболевания и увеличение клеточности и уровня иммуноглобулинов в спинномозговой жидкости, увеличение количества очагов при магнитно-резонансном исследовании [135].
Успех применения инфликсимаба дал толчок к созданию новых молекул, способных блокировать передачу сигнала через TNFR. Кроме того, мышиные последовательности в вариабельных доменах тяжелой и легкой цепи инфликсимаба вызывали у части пациентов продукцию вторичных антител, которые блокировали действие инфликсимаба и делали больных невосприимчивыми к терапии. Чтобы преодолеть это ограничение, был выбран путь создания ингибиторов с полностью человеческими аминокислотными последовательностями.
На сегодняшний день, кроме инфликсимаба, для клинического применения одобрены четыре антагониста TNF (см. Рис. 2):
Этанерцепт - рекомбинантный ингибитор TNF, сконструированный на основе растворимого TNFR2. В основу его разработки легли данные о том, что в организме человека присутствует растворимая форма второго рецептора TNF [136, 137]. «Слущиваемый» под действием металлопротеаз TNFR2 является дополнительным звеном регуляции активности TNF [138]. Этанерцепт представляет собой димер внеклеточной части TNFR2, генетически слитый с Fc-фрагментом иммуноглобулина IgGl. Соединение с константным участком антитела существенно увеличивает период полужизни препарата в системном кровотоке за счет рециркуляции белка через FcRn рецептор [139]. Нейтрализующая активность гибридного белка была продемонстрирована как в in vitro, так и в in vivo опытах [140], а позже подтверждена в клинических испытаниях на пациентах, страдающих ревматоидным артритом [141, 142].
Однако при терапии воспалительных заболеваний кишечника этанерцепт, в отличии от инфликсимаба, не показал терапевтической эффективности [143]. Экспериментальный блокатор TNF онерцепт, полученный на основе другого рецептора TNF - TNFR1 (р55), несмотря на обнадеживающие пилотные клинические исследования [144] в рандомизированном плацебо-контролируемом двойном слепом исследовании, также не показал эффективности в терапии болезни Крона [145]. Исследования in vitro, в котором изучались Т-лимфоциты из собственной пластинки слизистой больных, страдающих болезнью Крона, показали, что тогда как и инфликсимаб, и этанерцепт блокируют TNF, только инфликсимаб связывается с Т-клетками в очаге поражения и индуцирует в них апоптоз [146]. Этим может объясняться различие эффективности блокаторов на основе антител и рекомбинантных рецепторов в воспалительных заболеваниях кишечника.
Изучение взаимодействия Vhh41 и TNF человека методом поверхностного плазменного резонанса
Генетическая конструкция, кодирующая биспецифическое антитело А9 была собрана ГЩР реакцией с 4 праймерами аналогичной, описанной выше для гена одноцепочечного антитела ahT-4. Получившаяся в результате последовательность состояла из: гена однодоменного антиNF антитела [198], затем последовательности, кодирующей линкер вида (Gly4Ser)3, и гена одноцепочечного анти-Р4/80 антитела (любезно предоставлен С.Гордоном и М.Стейси). Сайты узнавания рестриктаз Ncol и Xhol были включены в последовательность прямого и обратных праймеров соответственно. После рестрикции ПЦР продукта и клонирования его в экспрессионный вектор pET-28b (Novagen) последовательность, кодирующая полигексидиновую метку оказалась на 3 конце в той же рамке считывания. Для получения контрольного антитела шА9 мутантный ген анти-Г4/80 scFv, содержащий вместо CDR последовательностей глицин-сериновые вставки был синтезирован de-novo (Geneart, Германия) и клонирован вместо нативного гена анти-F4/80 (см. Рис. 31В).
Экспрессионные вектора, несущие вставки, кодирующие А9 и шА9 были использованы для трансформации клеток Е.coli штамма Rosetta2(DE3)pLysS (Novagen). Лучшие клоны продуценты были отобраны методом иммуноблотинга колоний с использованием никель-конъюгированной пероксидазы (Pierce, 15165). Бактериальные культуры наращивались в среде LB, содержащей 50 цг/мл карбенициллина (Sigma -С1389) и 50 цг/мл хлорамфеникола (Sigma - С1863) до логарифмической фазы, а затем экспрессия индуцировалась 0.2 мМ ИПТГ. Через 4 часа культуры подвергались центрифугированию при 3200 g в течение 30 мин. Осадки замораживались а затем ресуспензировась в лизирующем буфере (50 мМ TrisHCl, 300 MMNaCl, 5% глицерин, 0.5% детергента Triton Х-100, 10000 Ед/мл лизоцим, 10 мМ Р-меркаптоэтанол) а потом разрушались с помощью утразвукового гомогенизатора. Лизаты центрифугировались при 17000 g в течение 40 мин., супернатанты отбирали и фильтровали через фильтр с диаметром пор 0,22 цм. БиспецифическЫ антитела А9 и тА9 очищались из просветленных супернатантов на хроматографической колонке, содержащей агарозу, конъюгированную с Ni-нитрилоуксусной кислотой (Invitrogen R90115). Аффинную хроматографию проводили по протоколу производителя. Полученный элюат концентрировали, диализовали против фосфатно-солевого буфера, с последующей фильтрацией через фильтр 0.22 мкм. Концентрация белка в растворе измерялась с помощью реакции с 2,2 -бицинхониновой кислотой (набор PIERCE 23225) по протоколу фирмы производителя. Гомогенность полученного препарата была проверена методом электрофореза в 15% полиакриламидном геле в присутствии додецилсульфата натрия с последующей окраской кумасси.
Взаимодействие антител А9 и тА9 с рекомбинантным TNF человека методом поверхностного плазмонного резонанса.
Сравнение аффинностей и кинетик взаимодействия антител А9 и шА9 с рекомбинантным TNF человека проводилось на приборе ProteOn XPR36 (Bio-Rad). В ходе измерения всех взаимодействий использовался фосфатно-солевой буфер, имеющий рН=7,4, в который был добавлен детергент Tween 20 до концентрации 0,005%, температура поверхности чипа составляла 25 С. Рекомбинантный TNF человека был экспрессирован в Е. coli по описанной ранее методике [203]. Антитела А9 и тА9 в концентрации 50 нМ иммобилиз провались через амино-группу на поверхности биочипа с модифицированной альгинатной полимерной поверхностью (Bio-Rad 176-5011). Затем аналит (TNF человека) в пяти двукратно убывающих концентрациях (50 -3 нМ) наносились в пять параллельных каналов. В шестой канал вводился буфер, не содержащий антитела, для нормировки. Анализ полученных сенсограмм проводился в программе ProteOn Manager (Bio-Rad) с использованием модели Ленгмюра.
В экспериментах с перитонеальными макрофагами клетки перитонеальной полости выделялись из мышей дикого типа (C57BL/6) и сразу же окрашивались с использованием антител, коъюгированных с флуорохромами. Для получения костномозговых макрофагов костный мозг выделялся, после чего клетки культивировались в течение 10 дней в кондиционный среде (полученной на линии L929), затем клетки снимались с пластика ледяным фосфатным буфером.
Перед окрашиванием Fc-гамма рецептор блокировался, затем клетки инкубировались с антителами А9 или тА9 или буфером, после чего клетки отмывались и окрашивались одним из трех способов: 1) поликлональными кроличьими антителами к hTNF-VnH, затем со вторичными антителами к IgG кролика, конъюгированными с флуорохромом. 2) моноклональными мышиными антителами к гексагистидиновой последовательность (Novagen - 70796), затем со вторичными антителами к IgG мыши, конъюгированными с флуорохромом. 3) к клеткам добавлялся рекомбинантный TNF человека, а затем моноклональные антиNF антитела (Miltenyi Biotec - clone: сА2), меченные флуорохромом.
Кроме того клетки окрашивались анти-Р4/80 и анти-CD 1 lb антителами, конъюгированными с флуорохромами. Образцы анализировались либо на приборе F ACS Aria (BDBiosciences) или Guava EasyCyte 8HT (Millipore) а затем полученные данные обрабатывались с помощью программы FlowJo (Treestar Inc.).
Оценка способности биспецифического антитела А9 удерживать TNF человека на поверхности макрофагов.
Перитонеальные макрофаги из мышей, продуцирующих TNF человека, выделялись и рассаживались в количестве 100 тыс. клеток на лунку в 96-луночные культуральные планшеты. Клетки инкубировались в течение 2 ч при 37С, 5%СОг, после чего не прикрепившиеся клетки смывались теплым фосфатным буфером. Затем клетки икубировались в течение ночи при 37С, 5% СОг. После промывки 200 мкл теплой среды DMEM клетки инкубировались с антителами А9 в концентрации 2мкг/мл или со средой DMEM 30 минут при 37С. После еще одной промывки клетки стимулировались ЛПС (Sigma, L2630) в концентрации 100 нг/мл. Через 4 ч культуральные супернатанты собирались и концентрация TNF человека измерялась с помощью набора для ИФА (eBioscience, 88-7346) по протоколу производителя.
Костный мозг из мышей, продуцирующих TNF человека выделялся, после чего клетки культивировались в течение 10 дней в кондиционный среде (полученной на линии L929), затем клетки снимались с пластика ледяным фосфатным буфером. Количество живых клеток подсчитывалось и они рассаживались на 96 луночные планшеты в концентрации 50000 клеток/лунку. Затем к клеткам добавлялось 250 цМ антитела А9 или однодоменного антитела hTNF-VffH или пустая среда (DMEM). Клетки инкубировались с антителами в течение 30 мин. Затем лунки промывались фосфатно-солевым буфером. После этого продукция TNF стимулировалась ЛПС (Sigma - L2630) в концентрации 100 нг/мл. Через 4 часа супернатанты собирались, концентрация TNF в них измерялась с помощью цитотоксического теста на линии мышиной фибросаркомы L929 по протоколу аналогичному описанному выше.
Исследование биологических свойств флуоресцентного сенсора Vhh41-KTNFin vitro и in vivo
На основании экспериментальных данных, полученных на линиях мышей, в которых ген Tnf удален в отдельных клеточных популяциях [70], была сформулирована гипотеза о возможных различных функциях TNF, производимого разными типами иммуноцитов. Так недавно было показано, что в модели экспериментальной туберкулезной инфекции TNF, продуцируемый Т-лимфоцитами, но не миелоидными клетками, имеет уникальную защитную функцию [188]. Кроме того в нашей лаборатории получены данные, указывающие на патогенные свойства TNF из миелоидных клеток при аутоиммунных заболеваниях [14]. Терапевтически применяемая полная блокировка ПМБне учитывает этих особенностей. В рамках развития данной гипотезы было выбрано специфическое ингибирование TNF, производимого клетками моноцитарно-макрофагального ряда, которое могло бы иметь существенное преимущество перед системной блокировкой этого цитокина. В частности, интактный сигнал от TNF, производимого В- и Т- лимфоцитами, мог бы снизить частоту побочных эффектов, а, кроме того, сделать антиNF терапию эффективной в тех болезнях, для которых ранее блокаторы TNF не показали клинической эффективности, или даже вызывали усиление симптоматики. Кроме того, такой подход может потенциально снизить необходимую дозу за счет адресной доставки к клеткам-продуцентам.
Для проверки этого предположения мы сконструировали и испытали биспецифическое антитело, которое одной своей частью связывается с поверхностью макрофагов за счет взаимодейсвия с трансмембранной молекулой F4/80, а второй специфичностью захватывает и блокирует производимый ими TNF.
Молекулярное клонирование, экспрессия и очистка биспецифических антител. Биспецифическое антитело - селективный блокатор макрофагального TNF -получило название А9. Для создания кодирующей его генетической конструкции были использованы однодоменное блокирующего антиNF антитело hTNF-VffH [198] и одноцепочечное антитело (scFv) против макрофагального поверхностного маркера F4/80 (любезно предоставленное С. Гордоном (Оксфордский университет, Великобритания) и М. Стейси (университет Лидса, Великобритания). Последовательности, кодирующие оба антитела были амплифицированы с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР) и клонированы в экспрессионный вектор таким образом, что они оказались в одной рамке считывания, а между ними образовалась нуклеотидная последовательность, кодирующая гибкий глицин-сериновый линкер (GSGGGGSG). На С-конце последовательности располагается последовательность, кодирующая гистидиновый гексамер, для последующей очистки белка (Рис. 31).
Дизайн биспецифического антитела А9, схематическое изображение его механизма действия, строение генетических конструкций, кодирующих биспецифическое антитело А9 и контрольный системный блокатор TNF -антитело тА9. (А) Биспецифическое антитело А9 состоит из однодоменного антитела (VHH) против TNF человека и одноцепочечного антитела (scFv) против поверхностной молекулы F4/80, экспрессирующейся на моноцитах и макрофагах. (Б) Принцип селективной блокировки TNF, производимого макрофагами: А9 связывется с поверхностью макрофагагов и захватывает высвобождаемый с их поверхности TNF, предотвращая его попадание в системную циркуляцию. (В) Схема генетической конструкции биспецифического антитела А9 и контрольного системного блокатора TNF - тА9. Ген однодоменного антиNF антитела сопровождается последовательностью, кодирующей гибкий глицин-сериновый линкер, а затем геном одноцепочечного антитела против F4/80. Затем следует последовательность, кодирующая гистидиновый гексамер для аффинной очистки. Контрольное антитело тА9 имеет аналогичную последовательность за исключением того, что 6 гипевариабельных участков анти-Р4/80 антитела заменены на последовательности вида (Gly3Ser)n, что препятствует связыванию антитела с поверхностью макрофагов и превращает его в системный ингибитор TNF.
Для изучения эффектов специфической блокировки TNF, производимого макрофагами, был необходим контрольный системный блокатор. Чтобы избежать эффектов связанных с различиями в аффинности антител, было решено использовать блокатор имеющий аналогичный А9 TNF-связывающий участок. А для того, чтобы исключить влияние других факторов, в частности изоэлектрической точки и молекулярной массы, которая может влиять на время полувыведения, контрольное антитело должно быть максимально приближено по первичной аминокислотной последовательности к изучаемому. Поэтому нами было сконструировано контрольное антитело - тА9, имеющее ту же структуру и аминокислотную последовательность, что и А9 за исключением того, что 6 его гипервариабельных участков в анти-Р4/80 scFv заменены на последовательности вида (Gly3Ser)n, той же длины, что исходные CDR участки (см. Рис. 31 В).
Оба антитела были экспрессированы в бактериальной системе и очищены методом аффинной хроматографии.
Размер антитела А9, определенный по электрофоретической подвижности и по данным ВЖЕХ, соответствовал расчетной молекулярной массе - 45 кДА (Рис. 32). хроматографии. Слева - значения молекуляного веса белков. (Б) Хроматограмма биспецифического антитела А9 (отмечена красным цветом), наложенная на хроматограмму маркеров молекулярной массы. (В) Функция зависимости времени прохождения молекулы в зависимости от молекулярной массы. Расчетная молекулярная масса биспецифического антитела А9 составила 43,4 кДа.
Взаимодействие антител А9 и тА9 с рекомбинантным TNF человека. Кинетика взаимодействия антител А9 и тА9 с рекомбинантным TNF человека измерялась методом поверхностного-плазмонного резонанса. Для этого оба антитела в концентрации 50 нМ были иммобилизованы на поверхности сенсорного чипа, после чего рекомбинантный TNF человека в серийных разведениях 50-3 нМ был нанесен в качестве аналита, а кинетика взаимодействия измерялась на приборе ProteOn XPR36. Оба антитела показали высокую аффинность: Kd А9 и тА9 составила 85 и 95 пМ соответственно. Это подтверждает, что внесенные мутации не повлияли на связывание с TNF. Кроме того оба антитела обладали сходными параметрами скорости связывания (Kforward, on-rate) и скорости диссоциации (Kreverse, off-rate) - приведены на Рис. 33 и в Таб. 3. Малая скорость диссоциации должна позволить антителу А9 удерживать связанный TNF.
Получение и характеристика нового рекомбинантного одно доменного антитела, специфически связывающегося с TNF человека, но не блокирующего его биологическую активность
Кинетика взаимодействия антител А9 и тА9 с рекомбинантным TNF человека измерялась методом поверхностного-плазмонного резонанса. Для этого оба антитела в концентрации 50 нМ были иммобилизованы на поверхности сенсорного чипа, после чего рекомбинантный TNF человека в серийных разведениях 50-3 нМ был нанесен в качестве аналита, а кинетика взаимодействия измерялась на приборе ProteOn XPR36. Оба антитела показали высокую аффинность: Kd А9 и тА9 составила 85 и 95 пМ соответственно. Это подтверждает, что внесенные мутации не повлияли на связывание с TNF. Кроме того оба антитела обладали сходными параметрами скорости связывания (Kforward, on-rate) и скорости диссоциации (Kreverse, off-rate) - приведены на Рис. 33 и в Таб. 3. Малая скорость диссоциации должна позволить антителу А9 удерживать связанный TNF.
Кинетика взаимодействия биспецифического антитела А9 и контрольного антитела тА9 с рекомбинантным TNF человека. (А) Приведены кривые взаимодействия (сенсограммы) рекомбинантного TNF человека в концентрациях 50 нМ - 3 нМ с сенсорным чипом, на котором были иммобилизованы биспецифическое антитело А9 и контрольное антитело тА9. По оси абсцисс отложено время в секундах, по оси ординат сдвиг угла резонанса в условных единицах (УЕ). (Б) Для каждой группы сенсограмм были расчитаны значения скорости связывания (оп-rate), скорости диссоциации (off-rate) и константы диссоциации (Kd). Полученные средние значения, а также стандартное отклонение (SD) отложены на диаграмме изоаффиности. Диагональные линии соответсвуют указанным значениям константы диссоциации.
Для оценки сравнительной активности антитела А9 в ингибировании биологических эффектов TNF проводился цитотоксический текст на линии мышиной фибросаркомы L929. К постоянным концентрациям рекомбинантного TNF человека и актиномицина-D добавлялись серийные разведения антител А9 и тА9. Согласно полученным данным антитела А9 и тА9 имеют близкую антиNF активность (Рис. 34 А). Кроме того было подтверждено, что активность биспецифического антитела А9 соответствует активности однодоменного антиNF антитела hTNF-VffH, которое входит в состав А9 и тА9 (Рис. 34 Б). 10 10 10
АнтиNF активность биспецифического антитела А9, контрольного антитела mA9 и однодоменного антитела hTNF—VffH. (А) Сравнение активности биспецифического антитела А9 и контрольного антитела тА9. Приведена кривая выживаемости клеток мышиной фибросаркомы L929 при одновременном воздействии константной дозы TNF человека и убывающих доз антител А9 и тА9. (Б) Сравнение активности биспецифического антитела А9 и однодоменного антитела hTNF-VnH. Приведена кривая выживаемости клеток мышиной фибросаркомы L929 при одновременном воздействии константной дозы TNF человека и убывающих доз антител А9 и hTNF-VHH.Сравнение проводилось в молярных концентрациях для того, чтобы исключить влияния различий в молярной массе на определяемую активность антитела.
Анализ связывания антител А9 и тА9 с поверхностью макрофагов через взаимодействие с поверхностной молекулой F4/80.
Способность биспецифического антитела А9 специфически связываться с поверхностью макрофагов была оценена методом проточной цитофлуориметрии. Для этого клетки, выделенные из перитонеальной полости, инкубировались с антителами А9, после чего проводилось окращивание на макрофагальные маркеры CD1 lb и F4/80, одновременно осуществлялось специфическое окрашивание на биспецифическое антитело А9 через антитела к VHH ИЛИ антитела к полигистидиновой метке. Затем образцы подвергались проточной цитофлуориметрии и анализу.
Эти эксперименты показали, что биспецифическое антитело А9 способно связываться с поверхностью перитонеальных клеток, экспрессирующих F4/80 и CD1 lb на своей поверхности (моноциты и макрофаги) (Рис. 35 А - Г). В то же время, А9 не связывается с клетками перитонеальной полости, не имеющими этих маркеров (преимущественно лимфоциты) (Рис. 35 Д и Е). Снижения уровня параллельного анти-F4/80 окрашивания при добавлении антитела А9 за счет конкуренции двух антител за связывание с мишенью подтверждает, что А9 специфически взаимодействует именно с этой молекулой на поверхности клеток (Рис. 35 Ж и 3).
Также используется название Мас-1. Составной элемент рецептора СЗ компонента системы комплемента. У мышей экспрессируется на моноцитах, макрофагах и клетках микроглии. биспецифическое антитело
Клетки перитонеальной полости инкубировались с биспецифическим антителом А9 (изображено красным цветом) или без него (изображено синим цветом), а затем подвергались окрашиванию флуоресцентно меченными антителами к поверхностным маркерам, специфичным для клеток моноцитарно-макрофагального ряда, а также антителами, специфичными к А9. Затем полученные образцы анализировались методом проточной цитофлуориметрии. (А, В, Д, Ж) окрашивание через антитела к VHH домену. (Б, Г, Е, 3) окрашивание через антитела к полигексидиновой последовательности. (А, Б) биспецифическое антитело А9 связывается с клетками, отобранными по высокому уровню экспрессии F4/80 и CD1 lb (макрофаги). На изображеной гистограмме по горизонтальной оси отложено значение флуоресценции в канале окрашивания на А9, по вертикальной оси нормализованная частота встречаемости события. (В, Г) то же самое в форме гистограммы рассеяния. По горизонтальной оси отложено значение флуоресценции в канале окрашивания на А9, по вертикальной оси значение флуоресценции в канале окрашивания на F4/80. (Д, Е) -биспецифическое антитело А9 не связывается с клетками перитонеальной полости, не экспрессирующими F4/80 и CD1 lb (лимфоциты). На изображеной гистограмме по горизонтальной оси отложено значение флуоресценции в канале окрашивания на А9, по вертикальной оси нормализованная частота встречаемости события. (Ж, 3) -инкубация с биспецифическим антителом А9 снижает интенсивность окрашивания на F4/80. На изображеной гистограмме по горизонтальной оси отложено значение флуоресценции в канале окрашивания на F4/80, по вертикальной оси нормализованная частота встречаемости события.
Костномозговые макрофаги инкубировались с биспецифическим антителом А9 (изображено красным цветом), без него (изображено синим цветом), или с контрольным антителом тА9 (изображено черным цветом) а затем подвергались окрашиванию антителами, специфичными к А9/тА9. Полученные образцы анализировались методом проточной цитофлуориметрии. (А) биспецифическое антитело А9 специфически связывается с костномозговыми макрофагами. На изображеной гистограмме по горизонтальной оси отложено значение флуоресценции в канале окрашивания на А9, по вертикальной оси нормализованная частота встречаемости события. (Б) контрольное антитело шА9 неспособно связываться с костномозговыми макрофагами. На изображеной гистограмме по горизонтальной оси отложено значение флуоресценции в канале окрашивания на шА9, по вертикальной оси нормализованная частота встречаемости события.
Кроме того, в дополнительных цитофлуориметрических экспериментах было показано, что антитело А9, будучи прикрепленным к поверхности макрофагов, способно одновременно связывать экзогенно добавленный TNF человека (Рис. 37). Что подтверждает, что обе субъединицы биспецифического антитела функционально активны одновременно, и что связывание двух антигенов одновременно стерически возможно.
Клетки перитонеальной полости инкубировались с биспецифическим антителом А9 (изображено красным цветом) или без него (изображено синим цветом), затем с рекомбинантным TNF человека, после чего подвергались окрашиванию флуоресцентно-меченными антителами к поверхностным маркерам, специфичным для клеток моноцитарно-макрофагального ряда, а также антителами, специфичными к TNF человека. Полученные образцы анализировались методом проточной цитофлуориметрии. (А) биспецифическое антитело А9, способно удерживать TNF человека на поверхности макрофагов (клеток, отобранных по высокому уровню экспрессии F4/80 и CD1 lb). На изображеной гистограмме по горизонтальной оси отложено значение флуоресценции в канале окрашивания на TNF, по вертикальной оси нормализованная частота встречаемости события. (Б) те же данные в форме гистограммы рассеяния. По горизонтальной оси отложены значения флуоресценции в канале окрашивания на TNF, по вертикальной оси значения флуоресценции в канале окрашивания на F4/80.
